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  • 技術文章

    細胞趨化實驗新方法(二)--實時觀察細胞動態

    2016-04-26 17:34:20  來源:
    細胞趨化實驗新方法(二)--實時觀察細胞動態
    案例:細胞作為趨化因子
     
    上篇ibidi細胞趨化應用中(見鏈接:   )Dendritic cellCCL19細胞趨化反應為例介紹了細胞趨化的新方法
    本案例將介紹如何用細胞作為細胞運動的化學趨化因子。
    如圖所示:觀測通道中可以使用貼壁細胞,或者是3D培養的細胞。用于趨化的細胞可以直接注入其中一個儲液池中(圖一)。


     
    圖一:A待觀察細胞為貼壁細胞,受到左邊的儲液池中細胞影響具有了趨化行為。B待觀察細胞為3D培養細胞,在基質膠中同樣也受到了儲液池中的細胞的影響具有趨化行為。
     
    一、實驗材料準備:
     

    1. 儀器:
    • 細胞培養箱(高濕度,37,5%CO2
    • 倒置顯微鏡,具有10X相差物鏡和定時拍照功能
    • 鏡載加熱孵育系統(37,5%CO2
    • 可選配置:全自動載物臺,自動對焦系統
    • 分析軟件:可選用手動分析軟ImageJ“Manual Tracking”模塊,或全自動的ibidi提供的WimTaxis進行細胞軌跡追蹤。*后使用ibidi公司的“Chemotaxis and Migration Tool” 進行數據統計分析。
     
    1. 實驗材料準備:
    實驗前一天準備工作:
    為了減少ibidi細胞趨化載玻片與培養基中的氣泡,將載玻片和培養基提前24小時放入培養箱中

     

     
                          表三:制備1.6mg/ml 基質膠
     
    操作步驟:

    • 使用表一中的培養基制備  9 x 106 cells/ml 的細胞懸液
    • 1.5ml離心管中小心混勻表三中的12號試劑,避免產生氣泡
    • 在另一1.5ml離心管中準備150 μl  collagen I
    • 使用200μl槍頭從第二步的混合液中吸取30μl(圖一A
    • 小心混勻(圖一B),避免產生氣泡
    • 加入90μl細胞懸液到上一步混合液中(圖一C
    • 小心混勻(圖一D),避免產生氣泡

    圖一:制備細胞-基質膠混合液圖示,注意:1)避免產生氣泡,氣泡會破壞膠原纖維,不能使用Vortex2)膠原混合后,離膠凝大約有5分鐘時間,如果在凝膠后再進行操作會破壞膠原纖維;3)當剛加10x MEMNaHCO3中的時候會看到顏色變化,這表明沒有充分反應,因此加入混合液到膠原蛋白中后要充分混勻。


    1. 細胞趨化實驗
       
    2. 趨化試劑
    • 細胞趨化物:作為趨化因子的細胞    1-5 x 10cells/ml   
    • 培養基:建議使用同一種培養基,并且需要優化一下血清濃度,建議使用低濃度的血清,減少由于血清造成的生長因子而減弱了趨化造成的影響。
       
    1. 實驗步驟
    開始細胞實驗之前,要準備一個濕盒將細胞趨化載玻片放在濕盒中?梢杂靡粋放了浸濕的紙巾的10cm培養皿作為濕盒(如圖二)。

     

    貼壁細胞準備:

    • 如圖,用小塞子將C、DEF塞緊。使用20μl的槍頭從A中加入6μl細胞懸液。并使用同一個槍頭立即從B孔向外吸。直到觀測通道被細胞懸液充滿。
    • 在注液孔中加入培養基到圖示位置(圖三(B))。移走所有小塞子。將載玻片放在培養箱中等待細胞貼壁。

    圖三:(A)示意向觀測通道中加入帶觀測細胞懸液。(B)圖表示注液孔的切面圖。
     

    • 1-5小時后,用顯微鏡檢查細胞是否完全貼壁,如果完全貼壁,需要更換培養基。用小塞子將CD、E、F塞緊。從A中加入10μl新鮮培養基。注意不要加入氣泡。同樣用同一個槍頭從B向外吸。
    • 重復三次。
    • 在注液孔中加入培養基到圖示位置(圖三(B))。移走所有小塞子,將A、B孔塞緊,準備開始趨化實驗。

    圖四:細胞貼壁后用無細胞培養基更換觀測通道中的培養基。
     
    3D細胞準備

    • 如圖,用小塞子將C、DE、F塞緊。使用20μl的槍頭從A中加入6μl細胞-基質膠混合液。并使用同一個槍頭立即從B孔向外吸。直到觀測通道被細胞-基質膠混合液充滿。
    • 在注液孔中加入基質膠到圖示位置(圖五(C))。移走所有小塞子。小心將A、B孔塞緊,將載玻片放在培養箱中30-35分鐘,等待膠凝固后開始趨化實驗。

    圖五:(A)向觀測通道加入細胞-基質膠混合液。(B)用同一個槍頭從另一個孔中向外細。(C)注液孔切面圖。(D)A、B口塞緊,開始趨化實驗。
     
     
    加入趨化細胞:

    • 細胞貼壁或膠凝固后,將C、D兩個孔用塞子塞緊。從E中加入65μl新鮮培養基,充滿整個儲液池。(圖六)
    • 再小心移除C、D兩孔的塞子。把E、F兩孔塞緊,同樣的操作從C加入65μl培養基。
    • 20μl槍頭從C中加入15μl作為趨化因子的細胞懸液,用同一個槍頭從D中吸出15μl。
    • 重復上步操作,加入總量30μl的細胞懸液。
    • 將所有孔塞緊,靜置30分鐘后,就可以進行圖像采集。

    圖六:加入作為趨化因子的細胞。需先用無細胞的培養基將儲液池充滿,再逐漸加入細胞,加入后將所有塞子塞緊靜置一會,再開始實驗。
     
     

    • 對照,在兩邊儲液池中均加入60μl的無化學趨化物培養基作為空白對照(-/-),和兩個儲液池均加入30μl細胞懸液作為陽性對照(+/+)。
    • 按說明,將通道加液孔塞緊后可以進行圖像采集。
    • 將載玻片置入鏡載加熱孵育系統中,調整好采集位點,開始錄制實驗結果。
     
     
    三、圖像處理

    1. 手動細胞軌跡追蹤
    • 下載ImageJ,并安裝Manual Tracking模塊
    • 導入采集的系列圖像到ImageJ中,打開模塊“Manual Tracking”,選擇“Add track”開始記錄細胞軌跡
    • 選擇一個細胞,按照時間點單擊細胞,*點擊后,會有新窗口跳出來顯示初始位置,以后每次點擊,都將在這個新窗口中產生一個該細胞隨著時間的新坐標
    • 統計完足夠的細胞軌跡后,保存軌跡坐標表格
    • 至少收集30個細胞的軌跡才具有統計學意義,避免同一細胞追蹤兩次,去除由于凋亡會而不能采集完整的軌跡的細胞
    • 可以將“Overlay dots & lines”.avi格式導出
     
    2)全自動細胞軌跡追蹤
    使用ibidiWimTaxis自動分析平臺,將采集的系列圖像上傳到該平臺,幾個工作日后,會得到細胞軌跡的坐標表格數據結果。
     
    四、數據處理
     
    使用遷移指數( Forward Migration Indices*FMIs)作為比較趨化實驗和對照試驗的參數。在有趨化物的情況下,空白對照的FMI和與趨化物垂直方向的化學趨化的遷移指數(FMI)應是在0點左右。而與趨化物平行方向的化學趨化的遷移指數(FMI‖)與0點有顯著的區別表現出了化學趨向性。同時,使用Rayleigh Test**對細胞趨化的方向性進行檢驗。如果p值大于0.05表示了細胞運動的無序性,表明沒有方向性的遷移。此外,遷移速率等參數也能直接用于分析。
    *Foxman et al. Integrating conflicting chemotactic signals. The role of memory in leukocyte navigation, J Cell Biol 147, 577-588 (1999)  
    **Fisher, N. I. Statistical Analysis of Circular Data, Cambridge University Press, New York (1993) 

     

     


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